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O objetivo do estudo foi demonstrar a experiência exitosa no isolamento axênico de promastigotas de Leishmania infantum (L. infantum) em cultura, utilizando meios de agar base enriquecido com sangue desfibrinado de equino (SDE). No estudo foram utilizadas amostras de aspirado de linfonodo e fragmentos de baço, fígado e linfonodo, de cão infectado com a doença. Os meios de culturas empregados para o isolamento do parasito foram bifásico (sólido e líquido) e monofásico (líquido). Para a fase bifásica utilizou-se o Agar Sangue Base (BAB) e Neal Novy Nicolle (NNN), ambos enriquecidos com SDE, que após solidificação adicionou-se caldo de Brain Heart Infusion (BHI). Para fase monofásica utilizou-se o Meio 199 (M199) suplementado com 10% de soro fetal bovino (SFB). As amostras foram semeadas em duplicata, utilizando os protocolos: (NNN+SDE), (BAB+SDE) e (M199+SFB), mantidas em estufa por demanda bioquímica de oxigênio à 25ºC por 15 dias. Leituras microscópicas foram realizadas diariamente para acompanhamento da fase primária de crescimento do parasito. Após isolamento primário, as amostras foram seriadas e diluídas com concentração final de 1x106 parasitos/mL, para avaliação da curva de crescimento. O estudo demonstrou que nos tubos contendo meios bifásicos NNN e BAB enriquecido com SDE, o crescimento primário de parasito foi de 72 horas, enquanto para os tubos suplementados com SFB foi de 96 horas. Em relação à curva de crescimento observou-se que durante a fase exponencial, as amostras contendo fragmentos de baço, fígado e linfonodo enriquecidos SDE obtiveram maiores concentrações de promastigotas, quando comparado às amostras suplementadas com SFB, sendo 189x106 e 128x106 parasitos/mL, respectivamente. Na análise estatística, houve diferença significativa (p |
