| Autor: |
Marques-Neto LM; Laboratório de Imunopatologia das Doenças Infecciosas, Instituto de Patologia Tropical e Saúde, Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. lazaromoreiraneto@hotmail.com., Trentini MM; Laboratório de Imunopatologia das Doenças Infecciosas, Instituto de Patologia Tropical e Saúde, Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. monalisatrentini@gmail.com., das Neves RC; Laboratório de Imunopatologia das Doenças Infecciosas, Instituto de Patologia Tropical e Saúde, Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. rogeriocdasneves@hotmail.com., Resende DP; Laboratório de Imunopatologia das Doenças Infecciosas, Instituto de Patologia Tropical e Saúde, Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. danilo.resende2@hotmail.com., Procopio VO; Laboratório de Imunopatologia das Doenças Infecciosas, Instituto de Patologia Tropical e Saúde, Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. victor.goler16@gmail.com., da Costa AC; Laboratório de Imunopatologia das Doenças Infecciosas, Instituto de Patologia Tropical e Saúde, Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. adeliane.castrodacosta@gmail.com., Kipnis A; Laboratório de Bacteriologia Molecular, Instituto de Patologia Tropical e Saúde Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. andre.kipnis@gmail.com., Mortari MR; Laboratório de Neurofarmacologia, Instituto de Ciências Biológicas, Universidade de Brasília, Brasília 70919-970, DF, Brazil. mamortari@gmail.com., Schwartz EF; Laboratório de Neurofarmacologia, Instituto de Ciências Biológicas, Universidade de Brasília, Brasília 70919-970, DF, Brazil. beth.ferroni@gmail.com., Junqueira-Kipnis AP; Laboratório de Imunopatologia das Doenças Infecciosas, Instituto de Patologia Tropical e Saúde, Pública, Universidade Federal de Goiás, Goiânia CEP 74605-050, Goiás, Brazil. apkipnis@gmail.com. |
| Abstrakt: |
Mycobacterium massiliense is a rapid growing, multidrug-resistant, non-tuberculous mycobacteria that is responsible for a wide spectrum of skin and soft tissue infections, as well as other organs, such as the lungs. Antimicrobial peptides had been described as broad-spectrum antimicrobial, chemotactic, and immunomodulator molecules. In this study we evaluated an antimicrobial peptide derived from scorpion Tityus obscurus as an anti-mycobacterial agent in vitro and in vivo. Bioinformatics analyses demonstrated that the peptide ToAP2 have a conserved region similar to several membrane proteins, as well as mouse cathelicidin. ToAP2 inhibited the growth of four M. massiliense strains (GO01, GO06, GO08, and CRM0020) at a minimal bactericidal concentration (MBC) of 200 µM. MBC concentration used to treat infected macrophages was able to inhibit 50% of the bacterial growth of all strains. ToAP2 treatment of infected mice with bacilli reduced the bacterial load in the liver, lung, and spleen, similarly to clarithromycin levels (90%). ToAP2 alone recruited monocytes (F4/80 low Gr1), neutrophils (F4/80 - Gr1), and eosinophils (F4/80+ Gr1+). ToAP2, together with M. massiliense infection, was able to increase F4/80 low and reduce the percentage of F4/80 high macrophages when compared with infected and untreated mice. ToAP2 has in vitro anti-microbial activity that is improved in vivo due to chemotactic activity. |
